Оцінка впливу генетичних предикторів на ризик розвитку хронічного генералізованого катарального гінгівіту у дітей та формування його фенотипових особливостей

27 червня 2018
1182
Резюме

Мета. У роботі оцінювали вплив поліморфізму генів GSTT, GSTM, IL-1β, MMP-13 у зростанні ризику розвитку хронічного генералізованого катарального гінгівіту (ХГКГ) у дітей та формування фенотипових особливостей його перебігу. Об’єкт і методи дослідження. У клінічному дослідженні взяли участь 49 дітей віком 7–15 років, яким проводили стандартне стоматологічне обстеження, біохімічний аналіз показників вмісту Са, Р, кислої та лужної фосфатаз, малонового діальдегіду, каталази у ротовій рідині, молекулярно-генетичне дослідження поліморфних варіантів генів GSTT1,GSTM1, IL-1β (C3953T), MMP-13 (А77G) та пародонтопатогенів. Результати. Виявлено генетичні предиктори розвитку ХГКГ у дітей: делеційний поліморфізм гена GSTT1, гетерозиготний варіант 3953СТ за геном IL-1β та встановлено комбінації генотипів за генами GSTT1, GSTM1, IL-1β, MMP-13, які модулюють виникнення захворювання, як підвищуючи, так і знижуючи ризик його розвитку. Визначені генетичні предиктори підвищують ризик розвитку ХГКГ у дітей за рахунок поєднаного впливу несприятливих варіантів генів з інфікуванням пародонтопатогенами: Bacteroides forsythus, Treponema denticola, Porphyromonas gingivalis. Визначено асоціацію генетичного поліморфізму з показниками антиоксидантного захисту та фосфорно-кальцієвого обміну та їх поєднаний з генетичними предикторами вплив на формування фенотипу захворювання із тяжчим перебігом.

Вступ

Серед стоматологічних захворювань у дітей шкільного віку друге місце займають захворювання тканин пародонта, а саме гінгівіт, в основі якого лежить запальний процес — як відповідна реакція на вплив мікроорганізмів (пародонтопатогенів) зубного нальоту, без пошкодження зубоясеневого з’єднання (Попович З.Б., Кіндрат Г.В., 2010; Хоменко Л.О. та співавт., 2011). При несвоєчасній діагностиці та лікуванні гінгівіту створюються передумови для подальшого прогресування запалення з подальшим розвитком вже запально-деструктивних форм захворювання тканин пародонта — пародонтиту (Савичук Н.О., Марченко О.А., 2015; Хоменко Л.О. та співавт., 2015).

З огляду на мультифакторність захворювань тканин пародонта сучасна концепція їх профілактики заснована на оцінці факторів ризику і розробці прогностичних моделей розвитку цих захворювань. Останнім часом застосування молекулярно-генетичних методів для розуміння причин підвищеного ризику розвит­ку цих захворювань викликає інтерес у багатьох дослідників. У окремих роботах обговорювалося, що ризик розвитку запальних захворювань тканин пародонта зумовлюється генетичним поліморфізмом (Гасюк Н.В., Єрошенко Г.А., 2013).

Для визначення генетичної детермінанти у розвитку гінгівіту у дорослих пацієнтів досліджували генетичні маркери запального процесу — поліморфізм генів IL-1β, TNF-α, IL-10, детоксикації чужорідних сполук та ендогенних метаболітів — поліморфізм генів CYP 1A1, GSTM1, GSTT1, регуляторів ендотеліальної функції — поліморфізм генів позаклітинних протеїназ ММР-1, ММР-3, ММР-9, ММР-13 (Деньга О.В. та співавт., 2014; Zhan Y. et al., 2014). Наведені варіанти генів визначені як генетичні предиктори розвитку запальних захворювань тканин пародонта у дорослих, але не вивчені у пацієнтів дитячого віку. Відповідальність за активність запальної реакції несуть інтерлейкіни (IL)-1, які виконують низку функцій в імунній системі: ініціюють і регулюють імунні процеси, беруть участь у розвитку гострого та хронічного запалення, в резорбції кісткової тканини. Сімейство IL-1 включає в себе три гомологічних білки: IL-1α та -1β, які є прозапальними і кодуються відповідними генами. У носіїв алеля 3953T за геном IL-1β в гомо- та гетерозиготному станах синтезується підвищений рівень цитокіну у відповідь на певні стимули та розвивається більш інтенсивна запальна реакція зі схильністю до хронізації (Karimbux N.Y., Saraiya V.M., 2012). Знешкодження продуктів перекисного окиснення ліпідів відбувається за рахунок ензимів сімейства глутатіон-S-трансфераз (GSTs), активність яких генетично контролюється, а за наявності делеційного поліморфізму генів GSTT1, GSTM1 відповідні ізоферменти GSTs взагалі відсутні. Родину GSTs не­одноразово розглядали як важливі ферменти антиоксидантного захисту клітинного рівня, від яких залежать детоксикаційні процеси (Gorovenko N.G. et al., 2010). Істотна роль у деградації міжклітинного матриксу — колагену при запаленні у тканинах пародонта належить MMP-13 (колагеназа 3), що експресується епітеліальними клітинами пародонтальних кишень у відповідь на дію різних екзогенних факторів. За наявності гетерозиготного поліморфного варіанта A77G за геном ММР-13 спостерігається підвищення розщеплення білків міжклітинного матриксу і внаслідок цього зростає схильність до підвищеної деструкції тканин, які підтримують за фізіологічних умов зуби в яснах (Jain A., Bahuguna R., 2015). Наведені гени та їх взаємодія не вивчені у пацієнтів дитячого віку, що й зумовило проведення цього дослідження.

Мета — оцінити вплив поліморфізму генів GSTT, GSTM, IL-1β, MMP-13 у зростанні ризику розвитку хронічного генералізованого катарального гінгівіту (ХГКГ) у дітей та формування фенотипових особливостей його перебігу.

Об’єкт і методи дослідження

У клінічному дослідженні взяли участь 49 дітей віком 7–15 років. Стоматологічне обстеження дітей проводили за загальноприйнятою методикою: скарги, дані анамнезу, стоматологічний статус. Гігієнічні та пародонтальні індекси визначали відповідно до віку дитини. Гігієну порожнини рота оцінювали за допомогою спрощеного індексу (OHI-S), індексу ефективності гігієни порожнини рота (РНР), спрощеного індексу зубного нальоту О’Leary. Поширеність та інтенсивність ураження тканин пародонта — індекс РМА, для характеристики тканин пародонта і необхідності в лікуванні проводили базове пародонтальне обстеження за допомогою індексу Basic Periodontal Examination-Simplified BPE (Хоменко Л.О. та співавт., 2015).

Біохімічний аналіз ротової рідини включав показники вмісту Са, Р, кислої та лужної фосфатаз (Горячковский А.М., 2005), малонового діальдегіду (МДВ) (Гаврилов В.Б. та співавт., 1987), каталази (Королюк М.А. та співавт., 1988). Ротову рідину збирали у стерильні одноразові ємності (30–50 мл) у стані спокою протягом 10–15 хв в обсязі 10–15 мл, поміщали в термоконтейнер з охолоджувальними елементами і протягом 3 год перевозили в лабораторію.

Молекулярно-генетичне дослідження базувалося на виділенні геномної ДНК з букального епітелію та окремо ясенної рідини, забраної в ділянці ясеневої борозни для дослідження пародонтопатогенів. ДНК екстрагували з використанням набору «Quick-DNA Universal Kit» відповідно до протоколу виробника («ZymoResearch», США). Для визначення поліморфних варіантів генів GSTT1/GSTM1 застосовували метод мультиплексної ПЛР, а для генів IL-1β (C3953T, rs1143634), MMP-13 (А77G, rs2252070— полімеразну ланцюгову реакцію (ПЛР) з подальшим аналізом поліморфізму довжини рестрикційних фрагментів. Специфічні фрагменти генів ампліфікували комерційним набором «Master MixPCR» («NEOGEN», Україна) олігонуклеотидними праймерами («Metabion», Німеччина). Продукти ампліфікації фрагментів ДНК генів MMP-13 та IL-1β підлягали гідролітичному розщепленню ендонуклеазами рестрикції BsrI, TaqI («Thermo Scientific», США) відповідно. Реакцію рестрикції генів IL-1β та MMP-13 проводили в мікротермостаті при 65 °С протягом 12 год з подальшою зупинкою реакції за кімнатної температури гена IL-1β, підвищенням температури до 80 °С впродовж 20 хв для гена MMP-13. Стан фрагментів аналізували в 3% агарозному гелі (агароза фірми «Cleaver Scientific», Великобританія) з додаванням бромистого етидію. Для оцінки розміру фрагментів вносили маркер молекулярної ваги «Gene­Ruler 50bp DNALadder» («Thermo Scientific», США) з візуалізацією у трансілюмінаторі. Обробку отриманого зображення проводили в комп’ютерній програмі «Vitran». Ампліфіковані фрагменти гена IL-1β підлягали гідролітичному розщепленню за наявним сайтом рестрикції 5’-TCGA-3’, внаслідок чого утворювалися фрагменти з молекулярною масою 135 п.н. та 114 п.н. — генотип 3953СС. Сайт рестрикції зникав при нуклео­тидній заміні С на Т в позиції 3953, тому при нуклеотиді Т розмір фрагмента ампліфікованої ділянки ДНК після дії рестриктази залишався незмінним — 249 п.н. Відповідно у гетерозигот (генотип 3953СТ) на електрофореграмі спостерігали всі три дов­жини фрагментів водночас: 249, 135 та 114 п.н. (рис. 1).

Рис. 1. Електрофореграма розподілу рестрикційних фрагментів гена IL-1β
Генотип 3953СС – зразки 1, 2, 4, 5, 13–15; генотип 3953СТ – зразки 2, 8, 9, 11; генотип 3953ТТ – зразки 6, 7, 10, 12; М — маркер молекулярної маси.

Гідролітичне розщеплення ампліфікованої ділянки ДНК гена MMP відбувалося за наявності сайта рестрикції TGACCN, внаслідок чого утворювалися фрагменти з молекулярною масою 246, 170 та 29 п.н. (генотип 77GG). Після гідролітичного розщеплення продуктів ампліфікації гена MMP фрагменти ДНК з молекулярною вагою 416 та 29 п.н. відповідали генотипу 77АА, з молекулярною вагою 416, 24, 170 та 29 п.н. — генотипу 77AG (рис. 2).

Рис. 2. Електрофореграма розподілу рестрикційних фрагментів гена MMP-13
Генотип 77АА – зразки 1, 3, 15; генотип 77AG – зразки 2, 5–9, 11–14, 16; генотип 77GG – зразки 4, 10, 17, 18; М — маркер молекулярної маси.

За наявності ампліфікованого фрагмента ДНК 480 п.н. реєстрували генотип GSTT1 allele (функціональний алель), а за наявності фрагмента довжиною 215 п.н. — GSTМ1 allele (функціональний алель). При відсутності зазначених фраг­ментів генів GSTT1 та GSTМ1 виявляли варіант deletion (нефункціональний алель). Якість виділення ДНК і умови постановки ПЛР контролювали ампліфікацією фрагмента гена альбуміну з молекулярною масою 350 п.н., у разі його відсутності результати не враховували (рис. 3).

Рис. 3. Електрофореграма продуктів ампліфікації генів GSTT1/GSTM1
Генотип GSTT1 allele/GSTM1 deletion — зразки 1, 4, 5, 9, 15; генотип GSTT1 deletion/GSTM1 allele — зразки 6, 8, 12; генотип GSTT1 deletion/GSTM1 deletion — зразки 2, 3, 16; генотип GSTT1 allele/GSTM1 allele — зразки 7, 10, 11, 13, 14.

Статистичну обробку отриманих даних виконували з використанням програмних пакетів «Statistiсa 17.0» та «Excel 2010». Для порівняння розподілу частот генотипів у групах та підгрупах дослідження використовували описову статистику та обчислення критеріїв χ2 Пірсона з поправкою Йєтса. При дослідженні ген-факторних взаємодій використовували метод бінарної логістичної регресії. Статистично достовірними вважали відмінності при p<0,05.

Результати та їх обговорення

Для оцінки ролі генетичної компоненти у розвитку ХГКГ у дітей обстежених розподілено на дві групи: із виявленими ознаками захворювання на момент огляду та без них (табл. 1). Розподіл генотипів за поліморфним варіантом гена GSTM1 не відрізнявся в групах порівняння. У пацієнтів з ХГКГ виявлено достовірне зростання частоти нефункціонального алеля за геном GSTT1 порівняно з пацієнтами без клінічних ознак ХГКГ (χ2=5,86; р=0,015; відносний ризик (ВР) 13,33; 95% довірчий інтервал (ДІ) 1,51–117,4).

Таблиця 1. Розподіл поліморфних варіантів та алелів за генами GSTT1, GSTM1, IL-1β (C3953T), MMP-13 (A77G) у обстежених дітей
Ген Поліморфні варіанти Діти з ХГКГ Діти без ХГКГ Результати статистичного аналізу
n % n % χ2 ВР 95% ДІ p
GSTT1 allele 15 65,22 25 96,15 5,86 0,08 0,01–0,66 0,015
deletion 8 34,78 1 3,85 13,33 1,51–117,4
GSTM1 allele 8 34,78 12 46,15 0,27 0,62 0,20–1,97 0,605
deletion 15 65,22 14 53,85 1,61 0,51–5,09
IL-1β (C3953T) 3953CC 9 39,13 18 69,23 4,46 0,29 0,09–0,93 0,038
3953CT 12 52,17 6 23,08 4,45 3,64 1,07–12,4 0,043
3953TT 2 8,70 2 7,69 0,16 1,14 0,15–8,84 0,693
3953СT+TT 14 60,87 8 30,77 4,46 3,50 1,07–11,4 0,035
MMP-13 (A77G) 77AA 10 43,48 10 38,46 0,01 1,23 0,39–3,86 0,948
77AG 10 43,48 10 38,46 0,01 1,23 0,39–3,86 0,948
77GG 3 13,04 6 23,08 0,29 0,50 0,11–2,28 0,592
77AG+GG 13 56,52 16 61,54 0,00 1,23 0,39–3,86 0,948

Функціональний алель за геном GSTT1, навпаки, був достовірно підвищений у групі пацієнтів без гінгівіту (χ2 =5,86, р=0,015; ВР 0,08; 95% ДІ 0,01–0,66), що свідчить про протекторний ефект.

Частота поліморфного варіанта С3953Т за геном IL-1β була підвищеною (див. табл. 1) у пацієнтів з ХГКГ порівняно з пацієнтами без ХГКГ (52,17 та 23,08% відповідно), тобто встановлено асоціацію поліморфного варіанта 3953СT2=4,45; р=0,043; ВР 3,64; 95% ДІ 1,07–12,38), так само, як і двох поліморфних варіантів 3953СT та 3953ТТ (χ2=4,46; р=0,035; ВР 3,50, 95% ДІ 1,07–11,4) зі зростанням ризику ХГКГ. У дітей без ХГКГ достовірно частіше переважав поліморфний варіант 3953СC2=4,46; р=0,038; ВР 0,29; 95% ДІ 0,09–0,93), для якого визначено асоціацію зі зниженням ризику розвитку ХГКГ. Достовірних відмінностей у частоті розповсюдження генотипів за геном ММР-13 у досліджуваних групах не виявлено (p>0,05).

На наступному етапі нами оцінено сукупний вплив генів на ризик розвитку ХГКГ, для чого проаналізовано 86 можливих комбінацій генотипів за дослідженими генами. У табл. 2 представлені достовірні комбінації генотипів, які впливали на ризик розвитку ХГКГ. Встановлено, що у пацієнтів з ХГКГ, на відміну від осіб без ХГКГ, достовірно переважали комбінації нефункціонального алеля за геном GSTT1 з функціональним алелем за геном GSTM1 (χ2=4,15; р=0,042). У пацієнтів без ХГКГ такої комбінації взагалі не виявлено (див. табл. 2), а також комбінації нефункціонального алеля GSTT1 з поліморфним варіантом 3953СТ за геном IL-1β 2=4,92; р=0,027) та з поліморфним варіантом 77AG за геном MMP-13 2=4,15; р=0,042). На особливу увагу заслуговує те, що останніх двох комбінацій генотипів також не виявлено у пацієнтів без ХГКГ, тобто ці комбінації генотипів, асоційовані з розвитком ХГКГ, необхідно розглядати як генетичні або предикторні маркери, за наявності яких імовірно прогнозувати ризик цього захворювання у дітей. На противагу комбінаціям генотипів, які визначали спадкову схильність до розвитку ХГКГ, нами визначено чотири варіанти комбінацій генотипів (див. табл. 2), які переважали у пацієнтів без ХГКГ та мали протективний ефект. У дітей без ХГКГ достовірно підвищена частота комбінацій функціонального алеля за генами GSTT1/GSTM1 2=4,84; р=0,028; ВР 0,18; 95% ДІ 0,04–0,70), а також функціонального алеля за геном GSTT1 у поєднанні з генотипом 3953СС за геном IL-1β 2=6,07; р=0,014; ВР 0,19; 95% ДІ 0,05–0,64). Найбільший достовірний протекторний ефект встановлено для комбінації функціонального алеля за генами GSTT1, GSTM1 та поліморфним варіантом 3953СС за геном IL-β 2=6,36; р=0,012).

Таблиця 2. Достовірні комбінації поліморфних варіантів за генами GSTT1, GSTM1, IL-1β, MMP-13 у обстежених дітей
Поліморфні варіанти Пацієнти з ХГКГ Пацієнти без ХГКГ Результати статистичного аналізу
n % n % χ2 ВР 95% ДІ p
GSTT1/GSTM1
GSTT1 allele/GSTМ1 allele 3 13,04 12 46,15 4,84 0,18 0,04–0,70 0,028
T-deletion/М-allele 5 21,74 0 0,00 4,15 0,042
GSTT1/IL-1β (C3953T)
T-allele/3953СС 6 26,09 17 65,38 6,07 0,19 0,05–0,64 0,014
T-deletion/3953СТ 4 17,39 0 0,00 4,92 0,027
GSTМ1/IL-1β (C3953T)
М-allele/3953СС 1 4,35 8 30,77 4,06 0,10 0,01-0,90 0,044
GSTT1/MMP-13 (A77G)
T-deletion/77AG 5 21,73 0 0,00 4,15 0,042
GSTT1/GSTM1/IL-1β (C3953T)
T-allele/М-allele 0 0,00 8 30,77 6,36 0,012

Пацієнтів обстежено на носійство пародонтопатогенів методом ПЛР. Частота інфікування пародонтопатогенами хворих на ХГКГ дітей та без його проявів представлені у табл. 3. Оцінено взаємозв’язок інфікування наведеними збудниками з генетичними особливостями пацієнтів і станом ясен методом бінарної логістичної регресії. У пацієнтів із ХГКГ та нефункціональним алелем гена GSTT1 достовірно частіше виявляли пародонтопатогени Prevotella intermedia (р=0,015), Treponema denticola (р=0,003) та Porphyromonas gingivalis (р=0,047). Виявлено комбінацію поліморфного варіанта 3953СТ за геном IL-β та пародонтопатогенів Bacteroides forsythus (р=0,024) та Porphyromonas gingivalis (р=0,041). Отже, за наявності визначених нами генетичних маркерів пацієнти з ХГКГ були достовірно частіше інфіковані пародонтопатогенами з червоного та помаранчевого комплексу.

Таблиця 3. Частота інфікування дітей пародонтопатогенами, %
Група Пародонтопатогени
Prevotella intermedia Bacteroides forsythus Treponema denticola Aggre­gatibacter actino­mycetem­comitans Porphyro­monas gingivalis
Діти без ХГКГ 28,6 85,7 28,6
Діти з ХГКГ 21,1 47,4 42,1 94,7 47,4
Усього 12,1 39,4 24,2 90,9 39,4

При проведенні оцінки біохімічних показників слини залежно від поліморфізму генів GSTT1 та MMP-13 достовірних відмінностей не виявлено (р>0,05), тоді як для гена GSTM1 встановлено підвищення рівня кислої фосфатази за наявності функціонального (0,92±0,17) та делеційного поліморфізму (0,65±0,11) у групі з ХГКГ порівняно з цими показниками у групі без ХГКГ (0,53±0,09 та 0,30±0,05 відповідно) (табл. 4).

Достовірно гіршим був РНР у групі дітей з ХГКГ (2,28±0,22) порівно з групою без ХГКГ (1,58±0,26). Для дітей з ХГКГ характерне зниження показника фосфору за наявності алеля 3953Т в гомо- та гетерозиготному станах (4,74±0,44) порівняно з генотипом 3953СС (6,72±0,49) за геном IL-β. Показник МДА підвищений у групі дітей з ХГКГ та алелем 3953Т (0,86±0,31) порівняно з показником у групі дітей без ХГКГ (0,21±0,06) за геном IL1-β (табл. 5).

Таблиця 5. Біохімічні показники слини залежно від поліморфізму C3953T за геном IL-1β
Показник, одиниці виміру Група з гінгівітом Група без гінгівіту
CC CT+ТТ CC CT+ТТ
Біохімічні показники
Кальцій, ммоль/л 0,91±0,16 0,72±0,15 0,67±0,13 0,40±0,10
Фосфор, мг/дл 6,72±0,49* 4,74±0,44** 5,13±0,32* 5,05±0,07
Кисла фосфатаза, Од./л 0,80±0,17 0,72±0,12 0,44±0,07 0,39±0,06
Лужна фосфатаза, Од./л 0,82±0,26 0,68±0,09 0,45±0,05 0,49±0,13
Каталаза, мкат/г білка 4,51±1,33 9,27±2,64 6,59±1,24 6,72±2,75
МДА, мкмоль/л 0,43±0,10 0,86±0,31* 0,60±0,08 0,21±0,06*
Клінічні показники
РМА, % 23 19
G-V 1,76±0,05 1,85±0,11 1,32±0,12 1,62±0,09
OL 0,40±0,02 0,41±0,04 0,31±0,03 0,38±0,06
PHP 2,09±0,16 2,15±0,23 1,75±0,21 1,62±0,09

Отже, досліджені гени мали достовірний вплив на показники антиоксидантного захисту та фосфорно-кальцієвого обміну. Зазначимо, що у дітей із несприятливими комбінаціями генотипів за геном GSTM1 спостерігали вищу поширеність та інтенсивність ураження тканин пародонта (індекс РМА) і, відповідно, гірші показники гігієнічного догляду за порожниною рота (див. табл. 4). Результат аналізу клінічних проявів у дітей з ХГКГ свідчить, що за наявності алеля 3953СС за геном IL-β переважно діагностовано легкий ступінь перебігу ХГКГ (66,7%), середній ступінь тяжкості виявлено у 33,3% дітей відповідно. За наявності алеля 3953Т в гомо- та гетерозиготному станах у більшості випадків спостерігали середній ступінь тяжкості (64,3%) і лише у 35,7% дітей — легкий ступінь перебігу ХГКГ. Тяжчий перебіг захворювання відбувався на фоні підвищення процесів оксидативного стресу, зниження показників фосфорно-кальцієвого обміну, виявленого інфікування пародонтопатогенами та супроводжувався здебільшого вираженою кровоточивістю ясен під час чищення зубів.

Таблиця 4. Біохімічні показники залежно від поліморфізму за геном GSTM1
Показник Група з ХГКГ Група без ХГКГ
allele deletion allele deletion
Біохімічні показники
Кальцій, ммоль/л 0,92±023 0,70±0,13 0,72±0,16 0,47±0,15
Фосфор, мг/дл 5,02±0,78 5,56±0,44 5,12±0,40 5,11±0,28
Кисла фосфатаза, Од/л 0,92±0,17 0,65±0,11 0,53±0,09 0,30±0,05
Лужна фосфатаза, Од/л 0,85±0,13 0,65±0,14 0,50±0,09 0,41±0,05
Каталаза, мкат/г білка 8,79±4,9 7,17±1,28 3,64±0,89 10,59±1,54
МДА, мкмоль/л 1,13±0,57 0,49±0,08 0,49±0,07 0,54±0,16
Клінічні показники
РМА, % 19 21
G-V 1,72±0,10 1,87±0,09 1,58±0,15 1,27±0,10
OL 0,32±0,02 0,45±0,04 0,35±0,04 0,32±0,05
PHP 1,84±0,07 2,28±0,22 2,12±0,21 1,58±0,26

Висновки

1. Виявлено генетичні предиктори розвитку ХГКГ у дітей: делеційний поліморфізм гена GSTT1, гетерозиготний варіант 3953СТ за геном IL-1β та встановлено комбінації генотипів за генами GSTT1, GSTM1, IL-1β (C3953T), MMP13 (A77G), які модулюють виникнення захворювання, як підвищуючи, так і знижуючи ризик його розвитку.

2. З’ясовано, що визначені генетичні предиктори підвищують ризик розвитку захворювання на ХГКГ у дітей за рахунок поєднаного впливу несприятливих варіантів генів з інфікуванням пародонтопатогенами з червоного та помаранчевого комплексу: Bacteroides forsythus, Treponema denticola, Porphyromonas gingivalis.

3. Визначено асоціацію генетичного поліморфізму з показниками антиоксидантного захисту та фосфорно-кальцієвого обміну та їх поєднаний з генетичними предикторами вплив на формування фенотипу захворювання із тяжчим перебігом.

Список використаної літератури

  • Гаврилов В.Б., Гаврилова А.Р., Мажуль М.Н. (1987) Анализ методов определения продуктов перикисного окисления липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой. Вопр. медхимии, 1: 118–122.
  • Гасюк Н.В., Єрошенко Г.А. (2013) Сучасні уявлення про етіологію та патогенез хвороб пародонта. Світ мед. біол., 2: 207–211.
  • Горячковский А.М. (2005) Клиническая биохимия в лабораторной диагностике. Одесса, Экология, 607 с.
  • Деньга О.В., Ефремова О.В., Вербицкая Т.Г. (2014) Молекулярно-генетическая оценка предрасположенности работников химической промышленности к стоматологическим заболеваниям. Іннов. стоматол., 4: 56–61.
  • Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г., Токарев В.Е. (1988) Метод определения активности каталазы. Лаб. дело, 1: 16–19.
  • Попович З.Б., Кіндрат Г.В. (2010) Поширеність захворювань пародонту у дітей, які проживають на екологічно забруднених територіях. Вісн. стоматол., 2: 32–33.
  • Савичук Н.О., Марченко О.А. (2015) Дисбиоз и воспаление в комплексной терапии хронического генерализованного катарального гингивита у детей школьного возраста. Cовр. стоматол., 3: 46–50.
  • Хоменко Л.О., Голубєва І.М., Остапко О.І. (2015) Терапевтична стоматологія дитячого віку. Книга плюс, Київ, 329 с.
  • Хоменко Л.О., Остапко О.І., Дуда О.В. (2011) Екологічні аспекти стоматологічних захворювань у дітей. Клін. стоматол., 1–2: 53–63.
  • Gorovenko N.G., Rossokha Z.I., Podolskaya S.V. et al. (2010) The role of genetic determinant in the development of severe perinatal asphyxia. Tsitol. Genet., 44(5): 41–46.
  • Jain A., Bahuguna R. (2015) Role of matrix metalloproteinase in dental caries, pulp and periapicalinflammation: an overview. J. Oral Biol. Craniofacial. Res., 5(3): 212—218.
  • Karimbux N.Y., Saraiya V.M. (2012) Interleukin-1 gene polymorphisms and chronic periodontitis in adult whites: a systematic review and meta-analysis. J. Periodontol., 83(11): 1407–1419.
  • Zhan Y., Zhang R., Song X. (2014) Prioritization of candidate genes for periodontitis using multiple computational tools. J. Periodontol., 85(8): 1059–1069.
> Оценка влияния генетических предикторов на риск развития хронического генерализованного катарального гингивита у детей и формирование его фенотипических особенностей

И.А. Трубка, З.И. Россоха, С.П. Кирьяченко, Н.О. Савичук, Н.Г. Горовенко

Резюме. Цель. В работе оценивали влияние полиморфизма генов GSTT, GSTM, IL-1β, MMP-13 на риск развития хронического генерализованного катарального гингивита (ХГКГ) у детей и формирование фенотипических особенностей его течения. Объект и методы исследования. В клиническом исследовании приняли участие 49 детей в возрасте 7–15 лет, которым проводили стандартное стоматологическое обследование, биохимический анализ показателей содержания Са, Р, кислой и щелочной фосфатаз, малонового диальдегида, каталазы в ротовой жидкости, молекулярно-генетическое исследование полиморфных вариантов генов GSTT1, GSTM1, IL-1β (C3953T), MMP-13 (А77G) и пародонтопатогенов. Результаты. Выявлены генетические предикторы развития ХГКГ у детей: делеционный полиморфизм гена GSTT1, гетерозиготный вариант 3953СТ по гену IL-1β и установлено комбинации генотипов по генам GSTT1, GSTM1, IL-1β, MMP-13, которые модулируют возникновение заболевания, как повышая, так и снижая риск его развития. Исследуемые генетические предикторы повышают риск развития заболевания ХГКГ у детей за счет сочетанного воздействия неблагоприятных вариантов генов с инфицированием пародонтопатогенами: Bacteroides forsythus, Treponema denticola, Porphyromonas gingivalis. Определены ассоциации генетического полиморфизма с показателями антиоксидантной защиты и фосфорно-кальциевого обмена и их общее с генетическими предикторами влияние на формирование фенотипа заболевания с более тяжелым течением.

Ключевые слова: дети, хронический генерализованный катаральный гингивит, полиморфизм генов.

Адреса для листування:
Трубка Ірина Олександрівна
04112, Київ, вул. Дорогожицька, 9
Національна медична академія
післядипломної освіти імені П.Л. Шупика,
кафедра стоматології дитячого віку
E-mail: [email protected]

Одержано 17.05.2018